Bradford蛋白浓度测定试剂盒

产品简介：
考马斯亮兰G-250染料，在酸性溶液中与蛋白质结合，使染料的最大吸收峰的位置（lmax），由465nm变为595nm，在一定的浓度范围内，测定的吸光度值A595，与蛋白质浓度成正比。Bradford法测定蛋白浓度不受绝大部分样品中的化学物质的影响。样品中巯基乙醇的浓度可高达1M，二硫苏糖醇的浓度可高达5mM。但受略高浓度的去垢剂影响。需确保SDS低于0.1%，Triton X-100低于0.1%，Tween 20, 60, 80低于0.06%。含去垢剂的样品推荐使用生产的BCA蛋白浓度测定试剂盒。

操作说明：
一.微孔酶标仪法
    1. 完全溶解蛋白标准品，取10ml，稀释至250ml ，使终浓度为0.2mg/ml。待测蛋白样品在什么溶液中，标准品也宜用什么溶液稀释。但是为了简便起见，也可以用0.9%NaCl或PBS稀释标准品。
    2. 5×G250染色液使用前请颠倒3-5次混匀，取1ml  5×G250染色液，加入4ml双蒸水，混匀成 1×G250染色液，此1×G250染色液可在4℃保存一周。
    3. 将标准品按0,2,4,6,8,12,16,20微升分别加到96孔板中，加PBS稀释液补足到20微升。
    4. 将样品作适当稀释（最好多做几个梯度，如作2倍、4倍、8倍稀释），加20微升到96孔板的样品孔中。由于移液器在取小量时的误差，标准线前面的点可能不很准确，所以尽可能的让样品点落在标准线1/2后。
    5. 各孔加入200微升稀释后的1×G250染色液，室温放置3-5分钟。
    6. 用酶标仪测定A595，或560-610nm之间的其它波长的吸光度。
    7. 根据标准曲线计算出样品中的蛋白浓度。

二.分光光度计法
如没有酶标仪，可用分光光度计在离心管中混匀后加入比色皿中比色。